Презентация на тему методы стерилизации и дезинфекции. Виды и способы стерилизации медицинских инструментов и материалов. Воздушный метод стерилизации
СТЕРИЛИЗАЦИЯ ОБЕСПЕЧЕНИЕ ГИБЕЛИ НА/В МЕДИЦИНСКИХ ИЗДЕЛИЯХ МИКРООРГАНИЗМОВ ВСЕХ ВИДОВ, НАХОДЯЩИХСЯ НА ВСЕХ СТАДИЯХ РАЗВИТИЯ, ВКЛЮЧАЯ СПОРОВЫЕ ФОРМЫ СТЕРИЛИЗАЦИЯ ОБЕСПЕЧЕНИЕ ГИБЕЛИ НА/В МЕДИЦИНСКИХ ИЗДЕЛИЯХ МИКРООРГАНИЗМОВ ВСЕХ ВИДОВ, НАХОДЯЩИХСЯ НА ВСЕХ СТАДИЯХ РАЗВИТИЯ, ВКЛЮЧАЯ СПОРОВЫЕ ФОРМЫ
СПЕЦИФИЧЕСКИЕ ОБЩИЕ ТРЕБОВАНИЯ К ХИМИЧЕСКИМ СРЕДСТВАМ ДЛЯ СТЕРИЛИЗАЦИИ ИЗДЕЛИЙ МЕДИЦИНСКОГО НАЗНАЧЕНИЯ БЫСТРАЯ И ПОЛНАЯ РАСТВОРИМОСТЬ В ВОДЕ БЫСТРАЯ И ПОЛНАЯ РАСТВОРИМОСТЬ В ВОДЕ СТАБИЛЬНОСТЬ СТАБИЛЬНОСТЬ ЛЕГКОСТЬ И БЫСТРОТА УДАЛЕНИЯ С ИЗДЕЛИЙ ОСТАТКОВ СРЕДСТВ ДО БЕЗОПАСНОГО ДЛЯ ПАЦИЕНТОВ УРОВНЯ ЛЕГКОСТЬ И БЫСТРОТА УДАЛЕНИЯ С ИЗДЕЛИЙ ОСТАТКОВ СРЕДСТВ ДО БЕЗОПАСНОГО ДЛЯ ПАЦИЕНТОВ УРОВНЯ ОТСУТСТВИЕ СИЛЬНОГО И РАЗДРАЖАЮЩЕГО ЗАПАХА ОТСУТСТВИЕ СИЛЬНОГО И РАЗДРАЖАЮЩЕГО ЗАПАХА
СПЕЦИАЛЬНЫЕ ТРЕБОВАНИЯ К СРЕДСТВАМ СТЕРИЛИЗАЦИИ АНТИМИКРОБНОЕ ДЕЙСТВИЕ ШИРОКОГО СПЕКТРА, В ТОМ ЧИСЛЕ ОБЯЗАТЕЛЬНО В ОТНОШЕНИИ УСТОЙЧИВЫХ К ОПРЕДЕЛЕННОМУ АГЕНТУ СПОРОВЫХ ФОРМ БАКТЕРИЙ АНТИМИКРОБНОЕ ДЕЙСТВИЕ ШИРОКОГО СПЕКТРА, В ТОМ ЧИСЛЕ ОБЯЗАТЕЛЬНО В ОТНОШЕНИИ УСТОЙЧИВЫХ К ОПРЕДЕЛЕННОМУ АГЕНТУ СПОРОВЫХ ФОРМ БАКТЕРИЙ ХОРОШАЯ ПРОНИКАЮЩАЯ СПОСОБНОСТЬ СТЕРИЛИЗУЮЩЕГО АГЕНТА, В ТОМ ЧИСЛЕ ЧЕРЕЗ СТЕРИЛИЗАЦИОННЫЕ УПАКОВОЧНЫЕ МАТЕРИАЛЫ ХОРОШАЯ ПРОНИКАЮЩАЯ СПОСОБНОСТЬ СТЕРИЛИЗУЮЩЕГО АГЕНТА, В ТОМ ЧИСЛЕ ЧЕРЕЗ СТЕРИЛИЗАЦИОННЫЕ УПАКОВОЧНЫЕ МАТЕРИАЛЫ
В СОВРЕМЕННЫХ СТЕРИЛИЗАТОРАХ ДОЛЖНЫ БЫТЬ ОБЕСПЕЧЕНЫ: ЭФФЕКТИВНЫЕ РЕЖИМЫ РАБОТЫ ЭФФЕКТИВНЫЕ РЕЖИМЫ РАБОТЫ (за счет наличия функциональных систем, обеспечивающих достижение и поддержание заданных значений параметров режима в загруженной стерилизуемыми изделиями камере аппарата) (за счет наличия функциональных систем, обеспечивающих достижение и поддержание заданных значений параметров режима в загруженной стерилизуемыми изделиями камере аппарата) АВТОМАТИЧЕСКИЙ СПОСОБ УПРАВЛЕНИЯ АВТОМАТИЧЕСКИЙ СПОСОБ УПРАВЛЕНИЯ СВЕТОВАЯ И ЦИФРОВАЯ ИНДИКАЦИЯ ПРОЦЕССА СВЕТОВАЯ И ЦИФРОВАЯ ИНДИКАЦИЯ ПРОЦЕССА ЗВУКОВАЯ СИГНАЛИЗАЦИЯ ЗВУКОВАЯ СИГНАЛИЗАЦИЯ СИСТЕМА БЛОКИРОВОК ПРОЦЕССА ПРИ НЕСООТВЕТСТВИИ ПРЕДЪЯВЛЯЕМЫМ ТРЕБОВАНИЯМ СИСТЕМА БЛОКИРОВОК ПРОЦЕССА ПРИ НЕСООТВЕТСТВИИ ПРЕДЪЯВЛЯЕМЫМ ТРЕБОВАНИЯМ ВОЗМОЖНОСТЬ РАСПЕЧАТКИ ИНФОРМАЦИИ О СОВЕРШЁННОМ ЦИКЛЕ ВОЗМОЖНОСТЬ РАСПЕЧАТКИ ИНФОРМАЦИИ О СОВЕРШЁННОМ ЦИКЛЕ
СПЕЦИАЛЬНЫЕ ТРЕБОВАНИЯ К СТЕРИЛИЗАТОРАМ К ПАРОВЫМ ВОЗМОЖНОСТЬ ПОДСУШИВАНИЯ ИЗДЕЛИЙ В СТЕРИЛИЗАЦИОН- НОЙ КАМЕРЕ НОЙ КАМЕРЕ К ВОЗДУШНЫМ - ВОЗМОЖНОСТЬ ЦИРКУЛЯЦИИ ВОЗДУХА ВО ВРЕМЯ ЦИКЛА СТЕРИЛИЗАЦИИ СТЕРИЛИЗАЦИИ - ВОЗМОЖНОСТЬ ПРИНУДИТЕЛЬНОГО ОХЛАЖДЕНИЯ ПРОСТЕ- РИЛИЗОВАННЫХ ИЗДЕЛИЙ К ГАЗОВЫМ ВОЗМОЖНОСТЬ ДЕГАЗАЦИИ ПРОСТЕРИЛИЗОВАННЫХ ИЗДЕЛИЙ ВОЗМОЖНОСТЬ ДЕГАЗАЦИИ ПРОСТЕРИЛИЗОВАННЫХ ИЗДЕЛИЙ К ЖИДКОСТНЫМ - ВОЗМОЖНОСТЬ СТЕРИЛИЗАЦИИ ЕМКОСТИ - ВОЗМОЖНОСТЬ ОТМЫВА ИЗДЕЛИЙ ОТ ОСТАТКОВ СРЕДСТВА СТЕРИЛЬНОЙ ВОДОЙ СТЕРИЛЬНОЙ ВОДОЙ
ЭФФЕКТИВНОСТЬ СРЕДСТВ СТЕРИЛИЗАЦИИ ИЗДЕЛИЙ МЕДИЦИНСКОГО НАЗНАЧЕНИЯ Средство считают эффективным при снижении обсемененности тест-изделий, контаминированных тест-микроорга- низмами (из расчета 10 6 микробных клеток на тест-изделие), на 100%. Средство считают эффективным при снижении обсемененности тест-изделий, контаминированных тест-микроорга- низмами (из расчета 10 6 микробных клеток на тест-изделие), на 100%.
ДОСТИЖЕНИЯ В ОБЛАСТИ СТЕРИЛИЗАЦИИ РАЗРАБОТКА И ВНЕДРЕНИЕ НОВЫХ ХИМИЧЕСКИХ СРЕДСТВ НА ОСНОВЕ РАЗЛИЧНЫХ ДЕЙСТВУЮЩИХ ВЕЩЕСТВ, ПОЗВОЛЯЮЩИХ ПРОВОДИТЬ СТЕРИЛИЗАЦИЮ ИЗДЕЛИЙ ИЗ РАЗНОРОДНЫХ МАТЕРИАЛОВ И ОБЕСПЕЧИВАЮЩИХ ЭФФЕКТ СТЕРИЛИЗАЦИИ В ПРИЕМЛЕМЫЕ СРОКИ РАЗРАБОТКА И ВНЕДРЕНИЕ НОВЫХ ХИМИЧЕСКИХ СРЕДСТВ НА ОСНОВЕ РАЗЛИЧНЫХ ДЕЙСТВУЮЩИХ ВЕЩЕСТВ, ПОЗВОЛЯЮЩИХ ПРОВОДИТЬ СТЕРИЛИЗАЦИЮ ИЗДЕЛИЙ ИЗ РАЗНОРОДНЫХ МАТЕРИАЛОВ И ОБЕСПЕЧИВАЮЩИХ ЭФФЕКТ СТЕРИЛИЗАЦИИ В ПРИЕМЛЕМЫЕ СРОКИ
ДОСТИЖЕНИЯ В ОБЛАСТИ СТЕРИЛИЗАЦИИ ВНЕДРЕНИЕ НОВОГО СТЕРИЛИЗАЦИОННОГО ОБОРУДОВАНИЯ И МАТЕРИАЛОВ: ВНЕДРЕНИЕ НОВОГО СТЕРИЛИЗАЦИОННОГО ОБОРУДОВАНИЯ И МАТЕРИАЛОВ: - ПОРТАТИВНОГО ОБОРУДОВАНИЯ ДЛЯ СТЕРИЛИЗАЦИИ ИНФРАКРАСНЫМ МЕТОДОМ - ПОРТАТИВНОГО ОБОРУДОВАНИЯ ДЛЯ СТЕРИЛИЗАЦИИ ИНФРАКРАСНЫМ МЕТОДОМ - УПАКОВОЧНЫХ МАТЕРИАЛОВ, ПРЕДНАЗНАЧЕННЫХ ДЛЯ ПРИМЕНЕНИЯ ПРИ ПАРОВОМ, ВОЗДУШНОМ, ГАЗОВОМ И ПЛАЗМЕННОМ МЕТОДАХ СТЕРИЛИЗАЦИИ В ЛПУ - УПАКОВОЧНЫХ МАТЕРИАЛОВ, ПРЕДНАЗНАЧЕННЫХ ДЛЯ ПРИМЕНЕНИЯ ПРИ ПАРОВОМ, ВОЗДУШНОМ, ГАЗОВОМ И ПЛАЗМЕННОМ МЕТОДАХ СТЕРИЛИЗАЦИИ В ЛПУ - ХИМИЧЕСКИХ ИНДИКАТОРОВ РАЗЛИЧНЫХ КЛАССОВ, ПОЗВОЛЯЮЩИХ ОСУЩЕСТВЛЯТЬ В СТЕРИЛИЗАТОРАХ РАЗНЫХ ТИПОВ ОПЕРАТИВНЫЙ ВНЕШНИЙ И ВНУТРЕННИЙ КОНТРОЛЬ СТЕРИЛИЗАЦИИ - ХИМИЧЕСКИХ ИНДИКАТОРОВ РАЗЛИЧНЫХ КЛАССОВ, ПОЗВОЛЯЮЩИХ ОСУЩЕСТВЛЯТЬ В СТЕРИЛИЗАТОРАХ РАЗНЫХ ТИПОВ ОПЕРАТИВНЫЙ ВНЕШНИЙ И ВНУТРЕННИЙ КОНТРОЛЬ СТЕРИЛИЗАЦИИ
ДОСТИЖЕНИЯ В ОБЛАСТИ СТЕРИЛИЗАЦИИ ВНЕДРЕНИЕ НОВЫХ СТЕРИЛИЗАЦИОННЫХ ТЕХНОЛОГИЙ: ВНЕДРЕНИЕ НОВЫХ СТЕРИЛИЗАЦИОННЫХ ТЕХНОЛОГИЙ: - ПЛАЗМЕННОЙ ТЕХНОЛОГИИ С ПРИМЕНЕНИЕМ ЗАРУБЕЖНЫХ МОДЕЛЕЙ ПЛАЗМЕННЫХ СТЕРИЛИЗАТОРОВ - ПЛАЗМЕННОЙ ТЕХНОЛОГИИ С ПРИМЕНЕНИЕМ ЗАРУБЕЖНЫХ МОДЕЛЕЙ ПЛАЗМЕННЫХ СТЕРИЛИЗАТОРОВ - ТЕХНОЛОГИИ С ПРИМЕНЕНИЕМ УСТАНОВОК, ВЫРАБАТЫВАЮЩИХ ЭЛЕКТРОХИМИЧЕСКИ АКТИВИРОВАННЫЕ РАСТВОРЫ - ТЕХНОЛОГИИ С ПРИМЕНЕНИЕМ УСТАНОВОК, ВЫРАБАТЫВАЮЩИХ ЭЛЕКТРОХИМИЧЕСКИ АКТИВИРОВАННЫЕ РАСТВОРЫ
МЕТОДЫ СТЕРИЛИЗАЦИИ МЕТОД СТЕРИЛИЗУЮЩИЙ АГЕНТ ПАРОВОЙ ВОДЯНОЙ НАСЫЩЕННЫЙ ПАР ПОД ИЗБЫТОЧНЫМ ДАВЛЕНИЕМ ВОЗДУШНЫЙ СУХОЙ ГОРЯЧИЙ ВОЗДУХ ИНФРАКРАСНЫЙИК-ИЗЛУЧЕНИЕ ГЛАСПЕРЛЕНОВЫЙ СРЕДА НАГРЕТЫХ СТЕКЛЯННЫХ ШАРИКОВ ГАЗОВЫЙ ОКИСЬ ЭТИЛЕНА ФОРМАЛЬДЕГИД ОЗОН ПЛАЗМЕННЫЙ ПАРЫ ПЕРЕКИСИ ВОДОРОДА В СОЧЕТАНИИ С ИХ НИЗКОТЕМПЕРА- ТУРНОЙ ПЛАЗМОЙ ЖИДКОСТНОЙ РАСТВОРЫ ХИМИЧЕСКИХ СРЕДСТВ
ГОСТ Р «СТЕРИЛИЗАТОРЫ ПАРОВЫЕ БОЛЬШИЕ. Общие технические требования и методы испытаний» Общие технические требования и методы испытаний»
Государственное санитарно-эпидемиологическое нормирование Российской Федерации 4.2.МЕТОДЫ КОНТРОЛЯ. БИОЛОГИЧЕСКИЕ И МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЕ ФАКТОЫ Контроль удаления воздуха Контроль удаления воздуха в паровых в паровых стерилизационных камерах МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ МУК
Режимы стерилизации в инфракрасном стерилизаторе Инструменты Темпе- ратура, С Продолжительность, мин этапа выдержки цикла Цельнометалли- ческие мелкие 200±3 115 Более крупные (с замковыми частями, каналами и без них) 620 Массивные (стоматологические щипцы) 1025
ХАРАКТЕРИСТИКИ СРЕДСТВ, ИСПОЛЬЗУЕМЫХ В СТЕРИЛИЗАТОРАХ СТЕРРАД 100С И ХМТС-80 ХАРАКТЕРИСТИКИ СРЕДСТВ, ИСПОЛЬЗУЕМЫХ В СТЕРИЛИЗАТОРАХ СТЕРРАД 100С И ХМТС-80 Характерис- тика СТЕРРАД Агент стери- лизующий ХМТС Концентраци я перекиси водорода, % , Срок годности 9 месяцев 12 месяцев Упаковка Кассеты и бустеры Флаконы
ХАРАКТЕРИСТИКИ ЦИКЛОВ СТЕРИЛИЗАЦИИ В СТЕРИЛИЗАТОРАХ СТЕРРАД 100С и ХМТС-80 Характеристика СТЕРРАД 100С ХМТС-80 Расход средства в цикле, мл/1 л объема камеры 0,036 (0,021 ПВ) 0,088 (0,044 ПВ) Температура в стерилизаци- онной камере, С Продолжитель- ность цикла, мин Короткий Длинный - 72
ПРИНАДЛЕЖНОСТИ ДЛЯ ПЛАЗМЕННОЙ СТЕРИЛИЗАЦИИ СТЕРИЛИЗАТОР СТЕРИЛИЗАТОР СПЕЦИАЛЬНЫЕ ЛОТКИ С КРЫШКАМИ ИЛИ КОРЗИНЫ (ДЛЯ РАЗМЕЩЕНИЯ ИЗДЕЛИЙ) СПЕЦИАЛЬНЫЕ ЛОТКИ С КРЫШКАМИ ИЛИ КОРЗИНЫ (ДЛЯ РАЗМЕЩЕНИЯ ИЗДЕЛИЙ) СПЕЦИАЛЬНЫЕ УПАКОВКИ С ХИМИЧЕСКИМ СРЕДСТВОМ НА ОСНОВЕ ПЕРЕКИСИ ВОДОРОДА СПЕЦИАЛЬНЫЕ УПАКОВКИ С ХИМИЧЕСКИМ СРЕДСТВОМ НА ОСНОВЕ ПЕРЕКИСИ ВОДОРОДА СПЕЦИАЛЬНЫЕ УПАКОВОЧНЫЕ МАТЕРИАЛЫ СПЕЦИАЛЬНЫЕ УПАКОВОЧНЫЕ МАТЕРИАЛЫ ХИМИЧЕСКИЕ ИНДИКАТОРЫ ХИМИЧЕСКИЕ ИНДИКАТОРЫ БИОЛОГИЧЕСКИЕ ИНДИКАТОРЫ БИОЛОГИЧЕСКИЕ ИНДИКАТОРЫ
3 Без бустера 0,4 3 С бустером ПОЛИМЕР Д 1 Без б" title="ВОЗМОЖНОСТЬ СТЕРИЛИЗАЦИИ ИЗДЕЛИЙ С КАНАЛАМИ В «КОРОТКОМ ЦИКЛЕ» МАТЕРИАЛ КАНАЛА ДЛИНА КАНАЛА (Д), М ВНУТРЕННИЙ ДИАМЕТР КАНАЛА (ВД), ММ МЕТАЛЛ Д 3 Без бустера 0,4 3 С бустером ПОЛИМЕР Д 1 Без б" class="link_thumb"> 23 ВОЗМОЖНОСТЬ СТЕРИЛИЗАЦИИ ИЗДЕЛИЙ С КАНАЛАМИ В «КОРОТКОМ ЦИКЛЕ» МАТЕРИАЛ КАНАЛА ДЛИНА КАНАЛА (Д), М ВНУТРЕННИЙ ДИАМЕТР КАНАЛА (ВД), ММ МЕТАЛЛ Д 3 Без бустера 0,4 3 С бустером ПОЛИМЕР Д 1 Без бустера Без бустера 1,0 1 С бустером (длинный цикл) С бустером (длинный цикл) 3 Без бустера 0,4 3 С бустером ПОЛИМЕР Д 1 Без б"> 3 Без бустера 0,4 3 С бустером ПОЛИМЕР Д 1 Без бустера Без бустера 1,0 1 С бустером (длинный цикл) С бустером (длинный цикл)"> 3 Без бустера 0,4 3 С бустером ПОЛИМЕР Д 1 Без б" title="ВОЗМОЖНОСТЬ СТЕРИЛИЗАЦИИ ИЗДЕЛИЙ С КАНАЛАМИ В «КОРОТКОМ ЦИКЛЕ» МАТЕРИАЛ КАНАЛА ДЛИНА КАНАЛА (Д), М ВНУТРЕННИЙ ДИАМЕТР КАНАЛА (ВД), ММ МЕТАЛЛ Д 3 Без бустера 0,4 3 С бустером ПОЛИМЕР Д 1 Без б"> title="ВОЗМОЖНОСТЬ СТЕРИЛИЗАЦИИ ИЗДЕЛИЙ С КАНАЛАМИ В «КОРОТКОМ ЦИКЛЕ» МАТЕРИАЛ КАНАЛА ДЛИНА КАНАЛА (Д), М ВНУТРЕННИЙ ДИАМЕТР КАНАЛА (ВД), ММ МЕТАЛЛ Д 3 Без бустера 0,4 3 С бустером ПОЛИМЕР Д 1 Без б">
ОГРАНИЧЕНИЯ ПРИ СТЕРИЛИЗАЦИИ ПЛАЗМЕННЫМ МЕТОДОМ Не подлежат стерилизации плазменным методом: изделия из материалов, поглощающих влагу изделия из материалов, поглощающих влагу изделия из материалов, содержащих целлюлозу изделия из материалов, содержащих целлюлозу изделия из натуральных резин изделия из натуральных резин
ПОЛНОЦЕННЫЙ КОМПЛЕКС ПРИНАДЛЕЖНОСТЕЙ ДЛЯ НАДЕЖНОЙ СТЕРИЛИЗАЦИИ СТЕРИЛИЗАТОР СОВРЕМЕННОЙ МОДЕЛИ СТЕРИЛИЗАТОР СОВРЕМЕННОЙ МОДЕЛИ КАРТРИДЖ СО СТЕРИЛИЗУЮЩИМ СРЕДСТВОМ (для химических методов стерилизации) КАРТРИДЖ СО СТЕРИЛИЗУЮЩИМ СРЕДСТВОМ (для химических методов стерилизации) СТЕРИЛИЗАЦИОННЫЕ УПАКОВОЧНЫЕ МАТЕРИАЛЫ СТЕРИЛИЗАЦИОННЫЕ УПАКОВОЧНЫЕ МАТЕРИАЛЫ БИОЛОГИЧЕСКИЙ ИНДИКАТОР БИОЛОГИЧЕСКИЙ ИНДИКАТОР ХИМИЧЕСКИЕ ИНДИКАТОРЫ РАЗЛИЧНЫХ КЛАССОВ ХИМИЧЕСКИЕ ИНДИКАТОРЫ РАЗЛИЧНЫХ КЛАССОВ
СРЕДСТВА, ПРИГОДНЫЕ ДЛЯ СТЕРИЛИЗАЦИИ ИЗДЕЛИЙ (по данным НИИД) АЛЬДЕГИД- СОДЕРЖАЩИЕ – НА ОСНОВЕ ГЛУТАРОВОГО АЛЬДЕГИДА ГЛУТАРОВОГО АЛЬДЕГИДА ОРТОФТАЛЕВОГО АЛЬДЕГИДА ОРТОФТАЛЕВОГО АЛЬДЕГИДА АЛЬДЕГИДА ЯНТАРНОЙ КИСЛОТЫ АЛЬДЕГИДА ЯНТАРНОЙ КИСЛОТЫ КИСЛОРОД- СОДЕРЖАЩИЕ – НА ОСНОВЕ ПЕРЕКИСИ ВОДОРОДА НАДКИСЛОТ АКТИВНОГО КИСЛОРОДА ХЛОР-СОДЕРЖАЩИЕАНОЛИТЫ
ПРОБЛЕМЫ ПРИ ОСУЩЕСТВЛЕНИИ СТЕРИЛИЗАЦИИ ИЗДЕЛИЙ РАСТВОРАМИ ХИМИЧЕСКИХ СРЕДСТВ НЕОБХОДИМОСТЬ ИСПОЛЬЗОВАНИЯ СТЕРИЛЬНЫХ ЕМКОСТЕЙ ДЛЯ РАЗМЕЩЕНИЯ ИЗДЕЛИЙ В РАСТВОРЕ НА СТАДИЯХ: - СТЕРИЛИЗАЦИОННОЙ ВЫДЕРЖКИ ИЛИ ДВУ - ОПОЛАСКИВАНИЯ ИЗДЕЛИЙ ОТ ОСТАТКОВ ХИМИЧЕСКОГО СРЕДСТВА НЕОБХОДИМОСТЬ НАЛИЧИЯ БОЛЬШИХ КОЛИЧЕСТВ СТЕРИЛЬНОЙ ВОДЫ ДЛЯ ОПОЛАСКИВАНИЯ ИЗДЕЛИЙ ОТ ОСТАТКОВ СРЕДСТВА НЕОБХОДИМОСТЬ НАЛИЧИЯ БОЛЬШИХ КОЛИЧЕСТВ СТЕРИЛЬНОЙ ВОДЫ ДЛЯ ОПОЛАСКИВАНИЯ ИЗДЕЛИЙ ОТ ОСТАТКОВ СРЕДСТВА НЕОБХОДИМОСТЬ НАЛИЧИЯ СТЕРИЛЬНОГО 70% ЭТИЛОВОГО СПИРТА В СЛУЧАЕ ЕГО ИСПОЛЬЗОВАНИЯ ДЛЯ УСКОРЕНИЯ ПРОСУШИВАНИЯ КАНАЛОВ ЭНДОСКОПОВ ОТСУТСТВИЕ ВОЗМОЖНОСТИ СТЕРИЛИЗОВАТЬ ИЗДЕЛИЯ В УПАКОВАННОМ ВИДЕ
Слайд 2
Термическая: паровая и воздушная(сухожаровая). Химическая: газовая или химическими растворами Радиационная стерилизация - применяется в промышленном варианте Метод мембранных фильтров - применяется для получения небольшого количества стерильных растворов, качество которых может резко ухудшиться при действии других методов стерилизации
Слайд 3
Методы стерилизации, разрешенные для применения в ЛПУ.
Слайд 4
Термическая стерилизация
Обжигание и кипячениеОбжигание в настоящее время для стерилизации инструментов не используется. Метод можно применять в домашних условиях при невозможности использования других. Обжигание металлических инструментов проводится открытым пламенем. Обычно на металлический поднос кладут инструмент, наливают небольшое количество этилового спирта и поджигают его. Кипячение долгое время было основным способом стерилизации инструментов, но в последнее время применяется редко, так как при этом методе достигается температура лишь в 100°С, что недостаточно для уничтожения спороносных бактерий. Инструменты кипятят в специальных электрических стерилизаторах различной емкости. Инструменты в раскрытом виде (шприцы в разобранном виде) укладывают на сетку и погружают в дистиллированную воду (возможно добавление гидрокарбоната натрия - до 2% раствора). Обычное время стерилизации - 30 минут с момента закипания.
Слайд 5
Термическая стерилизация(паровой метод)
Для достижения температур выше точки кипения воды пользуются автоклавом. Автоклав представляет собой установку для стерилизации паром под давлением. Температура насыщенного пара зависит от давления. Режимы работы автоклава: 132 °C - 2 атмосферы(2 кгс/см2) - 20 минут - основной режим. Стерилизуют все изделия (стекло, металл, текстиль, КРОМЕ РЕЗИНОВЫХ). 120 °C - 1,1 атмосфера(1,1 кгс/см2) - 45 минут - щадящий режим. (стекло, металл, резиновые изделия, полимерные изделия - согласно паспорту, текстиль) 110 °C - 0,5 атмосферы(0,5 кгс/см2) - 180 мин - особо щадящий режим(нестойкие препараты, питательные среды) Компактный переносной автоклав
Слайд 6
Термическая стерилизация
Нередко удается достичь того же эффекта дробной стерилизацией в текучем паре при 100°С (тиндализация). Жидкость стерилизуется в этом случае при 100°С три дня подряд по 30 мин ежедневно; в промежутках между нагреваниями ее хранят в термостате, для того чтобы споры проросли, а затем вегетативные клетки были уничтожены при следующем нагревании. Для многих целей довольствуются частичной стерилизацией, т.е. уничтожением вегетативных форм микроорганизмов. Такого эффекта обычно достигают путем пастеризации - выдерживания в течение 5-10 мин при 75 или 80°С. Пастеризацией частично стерилизуют, в частности, молоко, вина. Применяют два метода пастеризации: кратковременное нагревание (20 с при 71,5-74°С) и сильное нагревание (2-5 с при 85-87°С).
Слайд 7
Термическая стерилизация(воздушный метод)
Сухой жар. Стерилизация осуществляется в специальных аппаратах - сухо-жаровых шкафах-стерилизаторах. Стерилизация в сухожаровом шкафу происходит при помощи циркуляции внутри него горячего воздуха. При стерилизации сухим жаром бактериальные споры переносят более высокие температуры и притом дольше, чем при стерилизации влажным жаром. Поэтому жаростойкую стеклянную посуду, порошки, масла и т. п. стерилизуют в течение 1 часа при температуре 180°С. Стерилизация в автоклаве и сухожаровом шкафу в настоящее время является главным, наиболее надежным способом стерилизации хирургических инструментов, стеклянной посуды
Слайд 8
Термическая стерилизация(гласперленовый метод)
Принцип действия гласперленового стерилизатора основан на приведении стерилизуемых хирургических инструментов в контакт с маленькими стеклянными сферами, имеющими температуру 250С. Стерилизатор предназначен для быстрой стерилизации цельнометаллических, не имеющих полостей, каналов и замковых частей, стоматологических и других медицинских инструментов и приспособлений в среде нагретых до температуры 190-290ºС стеклянных шариков при полном погружении в них мелких изделий, а также рабочих частей более крупных изделий. Стерилизация инструмента производится в течение очень короткого времени - не более 20 секунд. Благодаря такому короткому периоду и неразрушающему воздействию стерилизационных (глассперленовых) шариков на инструмент, негативное влияние высокой температуры практически отсутствует. Всего за 5 секунд стерилизует: щипцы, клещи, скальпель-держатели, зонды, шпатели, долота, зубила, алмазы, файлы, боры, корневые элеваторы, расширители, угловые наконечники, иглодержатели, пинцеты, десневые ножницы и т.д.
Слайд 9
Термическая стерилизация(инфракрасный метод)
Малогабаритный стерилизатор предназначен для стерилизации стоматологических и микрохирургических инструментов из металлов в условиях госпиталей, поликлиник, больниц и других лечебных и косметологических учреждений. Стерилизация осуществляется инфракрасным мощным кратковременным тепловым воздействием.
Слайд 10
Химическая стерилизация(газовый метод)
В мировой практике встречаются 3 основных метода низкотемпературной стерилизации: газовый этиленоксидный, газовый формальдегидный и плазменный. Газовая стерилизация осуществляется в специальных герметичных камерах. Стерилизующим агентом обычно являются: пары формалина (на дно камеры кладут таблетки формальдегида) или окись этилена. Инструменты, уложенные на сетку, считаются стерильными через 6-48 часов (в зависимости от компонентов газовой смеси и температуры в камере). Отличительной чертой метода является его минимальное отрицательное влияние на качество инструментария, в связи с чем способ используют прежде всего для стерилизации оптических, особо точных и дорогостоящих инструментов.
Слайд 11
При стерилизации пищевых продуктов, лекарственных препаратов и разного рода приборов, а также в лабораторной практике оправдало себя применение окиси этилена, которая убивает и вегетативные клетки, и споры, но действует только в том случае, если подвергаемые стерилизации материалы содержат некоторое количество (5-15%) воды. Окись этилена применяют в виде газовой смеси (с N2 или С02), в которой ее доля составляет от 2 до 50%. Этиленоксидный метод обеспечивает самый щадящий температурный режим стерилизации.
Слайд 12
Химическая стерилизация(плазменный метод)
Плазменный метод позволяет создать биоцидную среду на основе водного раствора пероксида водорода, а также низкотемпературной плазмы (ионизированный газ, образующийся при низком давлении). Это самый современный метод стерилизации, известный на сегодняшний день. Он позволяет стерилизовать любые медицинские изделия, от полых инструментов до кабелей, электроприборов,к которым в ряде случаев вообще не удается применить ни один из известных методов стерилизации. При этом методе после впрыскивания раствора перекиси водорода в стерилизационную камеру включается источник электромагнитного излучения частотой 13,56 Мгц, под воздействием которого одновременно происходит деление одной части молекул Н2О2 на две группы (ОН-), а другой части - на одну гидропероксильную группу (ООН-) и один атом водорода, сопровождающееся выделением видимого и ультрафиолетового излучения. В результате создается биоцидная среда, состоящая из молекул перекиси водорода, свободных радикалов и ультрафиолетового излучения.
Слайд 13
Плазма образуется под воздействием сильного электромагнитного излучения в атмосфере паров перекиси водорода. При отключении электромагнитного поля свободные радикалы преобразуются в молекулы воды и кислорода, не оставляя никаких токсичных отходов. Минимальное время обработки в плазменном стерилизаторе – от 35 минут, рабочая температура – 36-60°С. Одно из основных преимуществ этого метода – отсутствие токсичных отходов, образуются только кислород и водный пар. Плазменная стерилизация уничтожает все формы и виды микроорганизмов. Плазменные стерилизаторы – перспективное оборудование, но для большинства российских медицинских учреждений слишком дорогостоящее
Слайд 14
Химическая стерилизация(растворами антисептиков)
Стерилизация растворами химических антисептиков, также как лучевая и газовая стерилизация, относится к холодным способам стерилизации и не приводит к затуплению инструментов, в связи с чем применяется для обработки прежде всего режущих хирургических инструментов. Для стерилизации в основном используют три раствора: тройной раствор, 96° этиловый спирт и 6% перекись водорода. В последнее время для холодной стерилизации оптических инструментов стали применять спиртовой раствор хлоргексидина, первомур и другие. Для холодной стерилизации инструменты полностью погружают в раскрытом (или разобранном) виде в один из указанных растворов. При замачивании в спирте и тройном растворе инструменты считаются стерильными через 2-3 часа, в перекиси водорода - через 6 часов. Данный метод представляет интерес для стерилизации растворов, содержащих лекарственные вещества, изменяющиеся при воздействии высокой температуры. В качестве антисептиков находят применение: фенол, трикрезол, хинозол, нипагин, нипазол, хлорэтон, меркурофен и цефирол. В литературе имеются также сообщения о применении для этой цели хлоркрезола, хлорбутола, фенилмеркурнитрата, соединений четвертичного аммония (бензалконий, цетримид) и некоторых других веществ.
Слайд 15
Карболовая кислота входит в тройной раствор (раствор Крупенина). Им стерилизуют режущие инструменты и предметы из пластмасс. В нем хранятся простерилизованные иглы, скальпели, корнцанги, полиэтиленовые трубки. Лизол с зеленым мылом используется для помывки стен, полов, мебели операционно-перевязочного блока, а также для обработки инструментов, резиновых перчаток, предметов, загрязненных гноем или калом во время операции. Сулема (дихлорид ртути) 1: 1000, 1: 3000 Стерилизуются перчатки, дренажи и другие предметы. Оксицианид ртути 1: 10000 применяется для стерилизации мочеточниковых катетеров, цистоскопов и других инструментов с оптикой. Диоцид - препарат ртути, сочетает в себе антисептические и моющие свойства. Некоторые используют для обработки рук хирурга - руки моют в тазу раствором 1: 3000, 1: 5000 - 6 мин. Этиловый спирт применяется для стерилизации режущих инструментов, резиновых и полиэтиленовых трубок, 96%-м спиртом дубят руки хирурги перед операцией. Хотя 70%-й спирт бактерициднее 96%-го, однако спорообразная инфекция не погибает длительное время. Возбудители газовой гангрены и споры сибирской язвы могут сохраняться в спирте в течение нескольких месяцев. Для увеличения бактерицидности спиртовых растворов к ним добавляются тимол (1: 1000), 1%-й раствор бриллиантового зеленого (раствор Баккала), формалин и др.
Слайд 16
Давно используются бактерицидные свойства галогенов. Н. И. Пирогов применял йод спиртовый 2%-й, 5%-й и 10%-й, еще не зная о существовании микроорганизмов. Йод обладает бактерицидным и спороцидным эффектом. Он и ныне не утратил своего значения. Однако чаще используют его комплексные соединения с поверхностью - активными веществами, так называемыми. йодофорами, к которым относятся йодонат, йодопиродон, йодолан и др. Они чаще применяются для обработки рук хирурга и операционного поля. Соединения хлора издавна используются для дезинфекции (хлорная известь) и стерилизация (гипохлорид натрия, хлорамин и др.). Бактерицидность этих препаратов зависит от содержания в них активного хлора. В хлорамине активного хлора 28-29 %, а дихлоризоциануровой кислоте - 70-80 %, гипохлориде натрия - 9,5 %. Перекись водорода (33 % перекись водорода - пергидроль) в 3 % и 6 % концентрации используется для стерилизации и дезинфекции Она безвредна для человека. Смесь перекиси водорода с муравьиной кислотой, предложенная И. Д. Житнюком и П. А. Мелехоым в 1970 г., была названа первомуром. В процессе приготовления С-4 образуется надмуравьиная кислота - она и является действующим началом. Используется для обработки рук хирурга или стерилизации инструментов В Чехословакии предложили перстерил для стерилизации резиновых и полиэтиленовых трубок. В России выпущен бета-пропиолактон. В концентрации 1: 1000 синегнойная палочка в 2%-м растворе погибает в течение 10 мин. Его добавляют в количестве 0,2% в готовые питательные среды, которые затем инкубируют 2 ч при 37°С. Если оставить среду на ночь, пропиолактон полностью разложится.
Слайд 17
Стерилизация ионизирующим излучением
Антимикробная обработка может быть осуществлена с помощью ионизирующего излучения (у-лучи), ультрафиолетовых лучей и ультразвука. Наибольшее применение в наше время получила стерилизация у-лучами. Радиационный метод или лучевую стерилизацию γ-лучами, применяют в специальных установках при промышленной стерилизации однократного применения- полимерных шприцев, систем переливания крови, чашек Петри, пипеток и др.хрупких и термолабильных изделий. Используются изотопы Со60 и Cs137. Доза проникающей радиации должна быть весьма значительной - до 20-25 мкГр, что требует соблюдения особо строгих мер безопасности. В связи с этим лучевая стерилизация проводится в специальных помещениях и является заводским методом стерилизации (непосредственно в стационарах она не производится). Стерилизация инструментов и прочих материалов проводится в герметичных упаковках и при целостности последних сохраняется до 5 лет. Герметичная упаковка делает удобными хранение и использование инструментов (необходимо просто вскрыть упаковку). Метод выгоден для стерилизации несложных одноразовых инструментов (шприцы, шовный материал, катетеры, зонды, системы для переливания крови, перчатки и пр.) и получает все более широкое распространение. Во многом это объясняется тем, что при лучевой стерилизации нисколько не теряются свойства стерилизуемых объектов.
Слайд 18
Стерилизация ультрафиолетовым излучением
Источники УФ-излучения (длина волны 260 нм) - ртутные кварцевые лампы. Их мощное бактериостатическое действие основано на совпадении спектра испускания лампы и спектра поглощения ДНК микроорганизмов, что может является причиной их гибели при длительной обработке излучением кварцевых ламп, при недостаточно мощном действии УФ в прокариотической клетке активизируются процессы световой и темновой репарации, то есть клетка восстанавливается. Метод применяется для стерилизации помещений, оборудования в биксах, а также для стерилизации дистиллированной воды.
Слайд 19
Эффективный стерилизатор позволяющий стерилизовать хирургические инструменты и перевязочные материалы сухим теплом и ультрафиолетовыми лучами. Имеет мощное бактерицидное действие. Рециркулятор предназначен для обеззараживания воздуха помещений в присутствии и отсутствии людей в процессе принудительной циркуляции воздушного потока через корпус, внутри которого размещены две бактерицидные лампы низкого давления. Бактерицидная камера для хранения стерильных медицинских изделий
Слайд 20
Метод состоит в отделении микробов от жидкости с помощью стерильных микропористых фильтров Механизм фильтрации объясняется главным образом адсорбцией микробов, происходящей в порах фильтрующих материалов, которые в большинстве случаев заряжены отрицательно. В качестве микропористого фильтрующего материала используют каолин, фарфор, бумажно-асбестовую массу, инфузорную землю, коллодий и другие пористые материалы, а также стекло.
Слайд 21
Механический метод стерилизации. Бактериальная фильтрация
Механический метод стерилизации с помощью микропористых фильтров имеет некоторые преимущества по сравнению с методами тепловой стерилизации, когда раствор подвергается воздействию высокой температуры. Для многих растворов термолабильных веществ он по существу является вообще единственным доступным методом стерилизации. Широкое применение находят микропористые фильтры на химико-фармацевтических заводах и при производстве вакцин и сывороток. Бактериальные фильтры
Посмотреть все слайды
Слайд 1
Описание слайда:
Слайд 2
Описание слайда:
Слайд 3
Описание слайда:
Слайд 4
Описание слайда:
Слайд 5
Описание слайда:
Слайд 6
Описание слайда:
Слайд 7
Описание слайда:
Слайд 8
Описание слайда:
Слайд 9
Описание слайда:
Слайд 10
Описание слайда:
Слайд 11
Описание слайда:
Слайд 12
Описание слайда:
Слайд 13
Описание слайда:
Слайд 14
Описание слайда:
Слайд 15
Описание слайда:
Слайд 16
Описание слайда:
Используются следующие стерилизующие агенты и режимы: 6% р-р перекиси водорода при температуре + 50°С - 3 часа; при температуре + 18°С - 6 часов. Раствор перекиси водорода может быть использован в течение 7 суток со дня приготовления при условии его хранения в закрытой емкости в темном месте. При большем сроке хранения использование раствора может осуществляться только после контроля содержания активнодействующих веществ. Температура раствора в процессе стерилизации не поддерживается. Препарат "Сайдекс" (глутаровый альдегид) при комнатной температуре - 10 часов. Работа с препаратом должна проводиться в хорошо проветриваемом помещении. Обладает довольно сильным неприятным запахом. Может вызывать аллергические реакции у персонала. Препарат «Сайдекс NU» (надуксусная кислота) при комнатной температуре – 10 мин. Оптимальный на сегодняшний день препарат для экстренной стерилизации. Не обладает недостатками обычного «Сайдекса». Дорогостоящий. Ранее использовался 1% раствор отечественного препарата более + 18°С. Время стерилизации 45 минут. В последние "Дезоксон-1" (надуксусная кислота) при температуре не годы не производится, в связи с чем вышел из употребления. Существенным недостатком химической стерилизации хирургических инструментов является необходимость тщательного отмывания их от стерилизующего раствора перед использованием. 6% перекись водорода вызывает ожоги даже на неповрежденной коже. «Сайдекс» вызывает некрозы. Первомур – гемолиз. Срок сохранения стерильности изделий, простерилизованных химическим методом и находящихся в стерилизационной коробке, выложенной стерильной простыней - 3 суток. Хранить стерильные изделия в 70° этиловом спирте или спиртовом растворе хлоргексидина (как это делалось ранее) нельзя, т.к. он не оказывает стерилизующего действия, и в нем могут выжить устойчивые формы микроорганизмов (споры), что может привести к вторичному обсеменению ранее простерилизованных изделий.
Слайд 17
Описание слайда:
Слайд 18
Описание слайда:
Слайд 19
Описание слайда:
Слайд 20
Описание слайда:
Слайд 21
Описание слайда:
Слайд 22
Описание слайда:
Слайд 23
Описание слайда:
Слайд 24
Описание слайда:
Слайд 25
Описание слайда:
Слайд 26
Описание слайда:
Описание слайда:Химические методы: осуществляется с помощью химических тестов и термохимических индикаторов, изменяющих свое агрегатное состояние и цвет при достижении определенного для него плавления: для паровых стерилизаторов используется мочевина (карбамид) с розовым красителем температура плавления 132 градуса Цельсия бензойная кислота с фуксином - температура плавления 120°С; термоиндикаторная бумага, изменяющая свой цвет под воздействием определенной температуры (l20°C-132 С); для воздушных стерилизаторов: тиомочевина (тиокарбамид) без красителя, температура плавления 180°С; янтарная кислота, температура плавления которой 180°С термоиндикаторная бумага изменяет свой цвет при температуре 180°С.
Слайд 30
Описание слайда:
С января 2002 года в России введен в действие ГОСТ Р ИСО 11140-1 "Стерилизация медицинской продукции. Химические индикаторы. Общие требования". Согласно этому документу химические индикаторы распределены на шесть классов. 1-го класса являются индикаторами ("свидетелями") процесса. Примером такого индикатора является термоиндикаторная лента, наклеиваемая перед проведением стерилизации на текстильные упаковки или стерилизационные коробки. Изменение цвета ленты указывает, что упаковка подверглась воздействию процесса стерилизации. Такие же индикаторы могут помещаться в наборы хирургических инструментов или операционного белья. 2-й класс индикаторов предназначен для использования в специальных тестовых процедурах, например, при проведении теста Бовье-Дика (Bowie-Dick test). Этот тест не контролирует параметры стерилизации, он оценивает эффективность удаления воздуха из камеры парового стерилизатора. Индикаторы 3-го класса являются индикаторами одного параметра. Они оценивают максимальную температуру, но не дают представления о времени ее воздействия. Примерами такого рода индикаторов являются описанные выше химические вещества. 4-й класс - это многопараметровые индикаторы. Они содержат красители, изменяющие свой цвет при сочетанном воздействии нескольких параметров стерилизации, чаще всего - температуры и времени. Примером таких индикаторов служат термовременные индикаторы для контроля воздушной стерилизации. 5-й класс - интегрирующие индикаторы. Эти индикаторы реагируют на все критические параметры метода стерилизации. Характеристика этого класса индикаторов сравнивается с инактивацией высокорезистентных микроорганизмов. 6-й класс - индикаторы-эмуляторы. Эти индикаторы должны реагировать на все контрольные значения критических параметров метода стерилизации.
Описание слайда:Cлайд 1
Виды и способы стерилизации медицинских инструментов и материалов Казахстанско – Российский медицинский университет Кафедра ВК – II Курс пропедевтики внутренних болезней и сестринского дела Ф.И.О. студента Редькина Мария Факультет Общая медицина Курс 2 Группа 206 А Проверила Аманжолова Т.К. Алматы 2010г.Cлайд 2
План: Введение Этапы стерилизации 1 этап - дезинфекция 2 этап – предстерилизационная обработка: Фенолфталеиновая проба Азопирамовая проба 3 этап - стерилизация Методы стерилизации Профилактическая дезинфекция и стерилизация различных объектов терапевтического отделения. Заключение Литература
Cлайд 3
Введение: …Необходимо строго соблюдать правила использования дезинфекции, предстерилизационной очистки и стерилизации медицинского инструментария, оборудования, при проведении манипуляций, связанных с нарушением целостности кожных покровов соблюдать ОСТ 42-21-2-85. В поликлинике централизованное стерилизационное отделение, где работают два медицинских работника в две смены. Они отвечают за отработку медицинского инструмента, а также перевязочный материал… («Приказ № 408 «О мерах по снижению заболеваемости вирусным гепатитом в стране» от 12.07.89 г.»)
Cлайд 4
Методы стерилизации Стерилизация медицинского инструмента осуществляется воздушным, химическим, паровым методом.
Cлайд 5
Этапы стерилизации 1 этап - дезинфекция После использования медицинский инструментарий и перчатки погружают в емкость с дезинфицирующим средством в 3%-ном растворе хлорамина на 1 ч, затем промывают под проточной водой до исчезновения запаха хлора, дезинфекция кипячением металлических инструментов, стекла.
Cлайд 6
2 этап - предстерилизационная обработка Инструмент и перчатки замачивают в моющем растворе (33%-ный раствор перекиси водорода - 14 г, моющее средство - «Лотос» - 5 г, дистиллированная вода - 981 г) на 15 мин при температуре 50°С. каждое изделие моется 20 с, а затем в течение 10 мин промывается под проточной водой. После предстерилизационной обработки проводятся контрольные пробы - на отмывку от щелочи (фенолфталеиновая) и на скрытую кровь - азопирамовая. Предстерилизационная обработка
Cлайд 7
Фенолфталеиновая проба Проверяется 1% из партии, но не менее 3-5 изделий каждого наименования. Методика пробы. Ватой, смоченной в 1%-ном растворе фенолфталеина, протирают рабочие поверхности, места соединения. Проба считается положительной (некачественная промывка), если появляется розовое окрашивание. В данном случае вся партия подвергается повторной промывке.
Cлайд 8
Азопирамовая проба Предварительно готовят раствор, состоящий из азопирама и 3%-ного раствора перекиси водорода в равных количествах. Приготовленный раствор испытывают на пригодность ватой с кровью. Появление фиолетового окрашивания, быстро переходящего в розово-сиреневый цвет, говорит о пригодности препарата. Рабочий раствор можно использовать не более 2 ч. Чистый раствор азопирама хранится в холодильнике сроком до 2 месяцев. При проведении азопирамовой пробы результат трактуется следующим образом: при появлении фиолетового окрашивания вся партия инструментов обрабатывается повторно - была произведена некачественная предстерилизационная очистка.
Cлайд 9
Правила предстерилизационной обработки Медицинских изделий 1.По завершению дезинфекции медицинские инструментарии ополаскиваются проточной водой. Время выдержки 0,5 мин Затем: замачиваются при полном погружении в один из растворов моющего средства разрешенных уполномоченным органом в области санитарно-эпидемиологического благополучия населения. Первоначальная температура раствора 20-25, время выдержки 15 мин.
Cлайд 10
2.Мытьё каждого изделия в моющем растворе при помощи ерша или ватно-марлевого тампона. Время выдержки 0,5 мин. 3.Ополаскивание проточной водой. Время выдержки 10 мин. 4.Ополаскивание дистиллированной водой. Время выдержки 0,5 мин 5.Сушка горячим воздухом в сушильном шкафу. Первоначальная температура раствора 85. До полного исчезновения влаги.
Cлайд 11
3 этап - стерилизация Для стерилизации инструмент укладывается на решетки, и для контроля качества стерилизации закладывается температурно-временной индикатор - винар-лента. Открытым методом стерилизуется в воздушном стерилизаторе в течение 1 ч при температуре 180°С. В журнале отмечается время начала и окончания стерилизации, а также подклеивается температурно-временной индикатор, который после стерилизации изменяет свой цвет. Перевязочный материал, вату, белье стерилизуют в биксах или двухслойных мешках методом автоклавирования при температуре 120°C при давлении 1,1 атм. в течение 45 мин. На биксах ставится дата и часы стерилизации.
Cлайд 12
Профилактическая дезинфекция и стерилизация различных объектов терапевтического отделения. Термометры ртутные, медицинские -2% р-ра хлорамина- 15 минут. При полном погружении, затем промыть водой, хранить в сухом виде. Шпатель металлический -Кипячение в дистиллированной воде -30 минут или обработка сухим воздухом при температуре 120 градусов С – 45 минут. -Обработка сухим воздухом при температуре t=180 градусов С- 60 минут. Кушетки -Кушетка полностью покрыта клеенкой. 1% р-ра хлорамина, двукратное протирание или 3% р-ра хлорамина, двукратное протирание, если загрязнена кровью и ее компонентами или другими биологическими жидкостями. Ножницы -Кипячение в дистиллированной воде – 30 минут или в 2% содовом растворе -15 минут. При полном погружении. Мочалки для мытья пациентов. -Кипячение в дистиллированной воде- 30 минут.
Cлайд 13
Стерилизация паровым методом Стерилизующим агентом является водяной насыщенный пар под избыточным давлением стерилизацию производят в паровых стерилизаторах в течение 20-22 мин при давлении пара в стерилизационной камере 2 ± 0,2 кгс/см2 (0,2 ± 0,02 МПа) и температуре 132 ± 2°. Паровым методом стерилизуют изделия из текстильных материалов, стекла, коррозионно-устойчивого металла, резины Для достижения необходимого прогрева необходимо полное удаление воздуха из стерилизационной камеры и стерилизуемых объектов
Cлайд 14
Стерилизация воздушным методом Осуществляется сухим горячим воздухом в воздушных стерилизаторах при температуре 180° в течение 60-65 мин или при температуре 160° в течение 150 мин. Стерилизуют изделия из металла, стекла и силиконовой резины, а также разрушающиеся под действием влаги. Их укладывают в пакеты из крафт-бумаги. Воздушный метод нельзя применять при стерилизации термолабильных материалов
Cлайд 15
Химические методы Выполняются в закрытых емкостях, покрытых неповрежденной эмалью, а также сделанных из стекла или пластмассы. Стерилизуемые объекты погружают в раствор при температуре 18 ± 2°. Время стерилизационной выдержки в 6% растворе перекиси водорода - 60 ± 5 мин, дезоксоне-1 - 45-50 мин. После стерилизации изделия промывают стерильной водой в асептических условиях.
Cлайд 16
Стерильный стол накрывается 2 раза в день. Растворы дезинфекции инструментов и перчаток также меняются 2 раза в день. Дезинфицирующие средства готовятся централизованно в отдельном помещении. Для работы применяют 3%-ный раствор хлорамина для обработки инструмента, перчаток, ветоши; 1%-ный раствор хлорамина для обработки поверхностей, термометров, мытья полов, кушеток; 0,5%-ный раствор хлорамина для обработки рук.
Cлайд 17
Индивидуальные мочалка и мыло. Ванна -Дезинфекция 3%р-ом хлорной извести, двукратное протирание (или1 % р-р хлорамина, экспозиции 60 минут или другой рнегламентированный раствор. -Натирать ветошью с моющее-дезинфецирующим или чистящее- дезинфицирующим средством из расчета 1-2 г на 100кв.см,экспозиции 5 минут, затем ополоснуть в проточной воде. Резиновые коврики в душевой комнате. -5% р-ра хлорамина с 5 грамами моющего средства в 1 литре раствора. -Полное погружение на30 минут или натереть, но не смывать до полного высыхания. Обувь -25 % р-ра формалина или 40% р-ра уксусной кислоты, уложить в полиэтиленовый пакет на три часа, проветрить до исчезновения запаха. Судно, мочеприемник -3% осветленный р-р хлорной извести- 1ч. -полное погружение,последующее ополаскивание, хранение в сухом месте. -Присушить
Cлайд 18
Грелки,пузырьки для льда, резиновые кружки. -Двукратное протирание 1%р-ом хлорамина. -Промыть горячей водой с мылом, ополоснуть, высушить хронить в сухом месте. Наконечники клизменные, катеторы. -3% раствора хлорамина- 60 минут. -0.5 % моющий растворе при температуре 46 градусов С – 15 минут, или кипячении в 2% содовом р-ре -15 минут, с последующей мойкой. -Автоклавирование. Мензурки. -1% р-р хлорамина- 60 минут, ополаскивание или кипячение – 30 минут. Перчатки - 3% р-р хлорамина -60 минут или другой регламентированный дезраствор, полное погружение. -0.5% моющий раствор- 15 минут - Автоклавировиние, щядящий режим. Пипетки глазные. -Кипячение в дистиллированной воде- 30 минут, стерилизация в щядящем режиме автоклава в разобранном виде.
Государственное автономное образовательное учреждение среднего профессионального образования
Новосибирской области «Купинский медицинский техникум»
ПМ 04. Выполнение работ по профессии младшая медицинская сестра по уходу за больными
Стерилизация
- СТЕРИЛИЗАЦИЯ – метод, обеспечивающий гибель в стерилизуемом материале вегетативных и споровых форм патогенных и непатогенных микроорганизмов.
- Стерилизации должны подвергаться все предметы или отдельные виды диагностической аппаратуры, соприкасающиеся с раной, кровью, инъекционными препаратами, с поврежденными слизистыми оболочками.
Этапы стерилизации
Изделия, подлежащие стерилизации, обрабатывают в несколько этапов:
- Очистка;
- Дезинфекция;
- Предстерилизационная очистка;
- Стерилизация.
В современных ЛУ организованы централизованные стерилизационные отделения (ЦСО), в которых проводят:
- Предстерилизационную обработку медицинского инструментария;
- Стерилизацию:
А) изделий медицинского назначения;
Б) белья и перевязочного материала.
Предстерилизационная обработка
Цель предстерилизационной обработки – удаление с изделий медицинского назначения белковых, жировых, лекарственных, механических загрязнений (в т.ч. крови, слизи), что обеспечивает эффективность последующей стерилизации и безопасное использование простерилизованных изделий.
Способы предстерилизационной обработки
Предстерилизационную обработку проводят ручным и механизированным способами.
Ручной способ:
1 этап – промывание после дезинфекции проточной водой в течение 30 сек до полного удаления запаха дезсредства.
2 этап – замачивание изделия в моющем средстве – 15 мин.
3 этап – мытье каждого изделия в том же растворе, в котором оно замачивалось, с помощью ерша в течение 30 сек.
4 этап – ополаскивание проточной водой.
5 этап – ополаскивание дистиллированной водой в течение 30 сек.
6 этап – сушка горячим воздухом при температуре 75-85 o С в сушильных шкафах
Методы, средства и режимы стерилизации
Используются следующие методы стерилизации:
- Термические (паровой, воздушный);
- Химические (газовый, химпрепаратами);
- Радиационный;
- Плазменный и озоновый (группа химических средств).
Выбор того или иного метода стерилизации конкретных изделий зависит от особенностей изделия и самого метода – его достоинств и недостатков.
Самые распространенные методы в ЛПУ – паровой и воздушный.
Паровой метод стерилизации
Стерилизующий агент – горячий пар под давлением. Для этого метода используют автоклав.
Упаковки: биксы, крафт-пакеты, бумага-ламинат, бязь.
Материалы: полимеры, стекло, латекс, ткань, коррозийностойкие металлы.
Достоинства: высокая проницаемость пара, большой выбор упаковки, дольше сохраняется стерильность, дешевый и простой в использовании метод.
Недостатки: увлажнение изделий, вызывает коррозию металлов.
Воздушный метод стерилизации
Для этого метода используют сухожаровые шкафы.
Стерилизующий агент – сухой горячий воздух (160-200 o С).
Упаковки: крафт-пакеты, бязь.
Материалы: металл, текстильные изделия.
Достоинства: дешевый, простой метод, не вызывает коррозии металла, не происходит увлажнения упаковки и изделий.
Недостатки: ограниченный выбор упаковки, медленное и неравномерное прогревание изделий, необходимость использования более высоких температур, невозможность использовать материалы из резины, полимеров.
Газовый метод стерилизации
Для этого метода используют газовые стерилизаторы.
Стерилизующий агент – формальдегид или этилен-оксид.
Упаковки: бумага-ламинат, пергамент, крафт-бумага.
Материалы: полимеры, стекло, металл.
Достоинства: невысокая температура, использование любых материалов.
Недостатки: токсичность для персонала и взрывоопасность при несоблюдении техники безопасности, продолжительный цикл стерилизации.
Радиационный метод стерилизации
Радиационный метод необходим для стерилизации изделий из термолабильных материалов.
Стерилизующий агент – ионизирующие γ и β излучения.
Упаковки: помимо бумажных используют пакеты из полиэтилена.
Достоинства: надолго сохраняется стерильность в упаковке.
Недостатки: дороговизна метода.
Радиационный – основной метод промышленной стерилизации. Используется предприятиями, выпускающими стерильные изделия однократного применения.
